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超詳細(xì)!HE染色介紹

瀏覽:1567 發(fā)表時間:2024-07-30

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蘇木精-伊紅染色法,簡稱HE染色法,石蠟切片技術(shù)里常用的染色法之一。蘇木精染液為堿性,主要使細(xì)胞核內(nèi)的染色質(zhì)與胞質(zhì)內(nèi)的核酸著紫藍(lán)色;伊紅為酸性染料,主要使細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞外基質(zhì)中的成分著紅色。


1、嗜酸型&嗜堿性

易于被堿性或酸性染料著色的性質(zhì)稱為嗜堿性和嗜酸性;而對堿性染料和酸性染料親和力都比較弱的現(xiàn)象稱為中性。


1)嗜堿性

嗜堿性是指組織和細(xì)胞內(nèi)酸性物質(zhì)成分對堿性染料(含有陽離子著色基團(tuán)的染料,如蘇木精、結(jié)晶紫、美藍(lán)等)具有親和性。


2、蘇木精&伊紅


1)蘇木精

由蘇木中提取的一種酚類化合物。是細(xì)胞學(xué)中常用的染色劑,常與伊紅合用。難溶于冷水和乙醚,易溶于熱水和熱乙醇,溶于堿、氨和硼砂的溶液。在分析化學(xué)中用于比色分析、顯微鏡分析,并用作pH值指示劑,變色范圍5.0-6.0,由黃色變紫色。

蘇木精為堿性染料,將細(xì)胞核染為藍(lán)色;在水溶液中,特別是在堿溶液中易被空氣氧化成紅棕色的氧化蘇木精。


2)伊紅

伊紅是一種化學(xué)合成的酸性染料,在水中解離成帶負(fù)電荷的陰離子,可以和蛋白質(zhì)氨基上帶正電荷的陽離子結(jié)合,從而使細(xì)胞胞漿染成不同程度的紅色或粉紅色,與蘇木素染色液染色形成的藍(lán)色細(xì)胞核形成鮮明對比,從而使蘇木素伊紅染色成為病理組織切片中最廣泛使用的一種常規(guī)染色方法。

伊紅分水溶性的和醇溶性:水溶性伊紅,易溶于水,溶液呈綠色熒光,能溶于醇。組織學(xué)用于上皮細(xì)胞、肌肉纖維和細(xì)胞漿染色。醇溶性伊紅,能溶于堿,微溶于乙醇,不溶于水。吸附指示劑,檢測F離子,定量分析滴定溴離子和碘離子。


3、細(xì)胞染色


1)細(xì)胞核染色

蘇木精為堿性天然染料,可使細(xì)胞核著色。細(xì)胞核內(nèi)染色質(zhì)的成分主要是DNA,在DNA的雙螺旋結(jié)構(gòu)中,兩條核苷酸鏈上的磷酸基向外,使DNA雙螺旋的外側(cè)帶負(fù)電荷,呈酸性,很容易與帶正電荷的蘇木精堿性染料以離子鍵或氫鍵結(jié)合而被染色。

由于組織或細(xì)胞的不同成分對蘇木精的親和力不同及染色性質(zhì)不一樣。經(jīng)蘇木精染色后,細(xì)胞核及鈣鹽粘液等呈藍(lán)色,可用鹽酸酒精分化和弱堿性溶液顯藍(lán),如處理適宜,可使細(xì)胞核著清楚的深藍(lán)色,胞漿等其它成分脫色。


2)細(xì)胞漿染色

細(xì)胞漿內(nèi)主要成分是蛋白質(zhì),為兩性化合物、細(xì)胞漿的染色與pH值有密切關(guān)系,當(dāng)pH調(diào)到蛋白質(zhì)等電點4.7-5.0時,胞漿對外不顯電性,此時酸或堿性染料不易染色。當(dāng)pH調(diào)到6.7-6.8時,大于蛋白質(zhì)的等電點pH值,表現(xiàn)酸性電離,而帶負(fù)電荷的陰離子,可被帶正電荷的染料染色,現(xiàn)時胞核也被染色,核和胞漿難以區(qū)分。

因此必須把pH調(diào)至胞漿等電點以下,在染液中加入醋酸使胞漿帶正電荷(陽離子),就可被帶負(fù)電荷(陰離子)的染料染色。伊紅是一種化學(xué)合成的酸性染料,在水中離解成帶負(fù)電荷的陰離子,與蛋白質(zhì)的氨基正電荷(陽離子)結(jié)合而使細(xì)胞漿染色,細(xì)胞漿、紅細(xì)胞、肌肉、結(jié)締組織,嗜伊紅顆料等被感染成不同程度的紅色或粉紅色,與藍(lán)色的細(xì)胞核形成鮮明的對比。


二、染色程序


1、染色步驟

①石蠟溶解:將切片置于70℃原位雜交儀中,烤片30min。

②脫蠟:將烤過后的切片迅速放入二甲苯中,2次,各5min。

③梯度水化:100%、90%、80%、70%的乙醇中各放置5min,蒸餾水放5min。

④核染:把水吸干,滴加蘇木精染色液,染色5min,流水沖洗掉蘇木素染液,顯微鏡觀察染色程度。

⑤分化:1%鹽酸酒精分化1-3s,水洗,浸入氨水中直至部分變成藍(lán)色后,水洗;顯微鏡觀察顏色,若顏色不夠深可直接滴加蘇木素染色液染色1min后,再次分化立即水洗;若過深則適當(dāng)增加分化時間。

⑥復(fù)染:滴加0.5%伊紅染液1滴,染色10-15s,蒸餾水清洗后顯微鏡觀察。

⑦梯度脫水:80%、90%、95%和100%乙醇進(jìn)行脫水。

⑧透明:浸入二甲苯2次,各5min,室溫晾干。

⑨封片:滴加一滴中性樹膠于組織上,蓋玻片封片。24h后置于顯微鏡下觀察拍照。


2、原理


1)分化作用

染色后,用某些特定的溶液將組織過多結(jié)合的染色劑脫去,這個過程稱為分化作用,所用的溶液稱為分化液。

在HE染色中用0.5%鹽酸乙醇作為分化液,因酸能破壞蘇木精的醌型結(jié)構(gòu),使組織與色素分離而褪色。經(jīng)蘇木精染色后,必須用0.5%鹽酸乙醇分化,使細(xì)胞核過多結(jié)合的蘇木精染料和細(xì)胞漿吸附的蘇木精染料脫去,再進(jìn)行伊紅染色,才能保證細(xì)胞核與細(xì)胞漿染色的分明。因此,在HE染色中分化是極為關(guān)鍵的一步。

2)返藍(lán)作用

分化之后,蘇木精在酸性條件下處于紅色離子狀態(tài),呈紅色,在堿性條件下處于藍(lán)色離子狀態(tài),呈藍(lán)色。組織切片經(jīng)0.5%鹽酸乙醇分化后呈紅色或粉紅色,故分化之后,立即用水除去組織切片上的酸而終止分化,再用弱堿性水(0.2%氨水)使蘇木精染上的細(xì)胞核呈現(xiàn)藍(lán)色,這個過程稱為返藍(lán)作用或藍(lán)化作用。

另外用自來水浸洗也可使細(xì)胞核返藍(lán),但所需時間較長。


3、試劑

①蘇木精染液:稱取蘇木精粉0.5g,銨礬24g溶解于70ml蒸餾水中,然后取NaIO 31g,水5ml,再加入甘油30ml和冰醋酸2ml,混合均勻,濾紙過濾。

②伊紅染液:稱取0.5g水溶性伊紅染液,溶于100ml蒸餾水中?;虼既苄砸良t0.5 g,80%酒精100ml。

③1%鹽酸酒精分化液:按體積比為濃鹽酸:無水乙醇 = 1:99配制。


4、注意事項

①染色時調(diào)節(jié)pH值很重要。如果組織塊在福爾馬林中固定時間長, 組織酸化而影響細(xì)胞核著色。因此,要在自來水中沖洗時間長一些或在飽和碳酸鋰水溶液中處理10-30min,這樣可以使細(xì)胞核著色較深。染伊紅時胞漿著色不佳,可在伊紅溶液中滴加1-2滴冰醋酸。

②切片染蘇木精后,分色這一步是關(guān)鍵,應(yīng)在顯微鏡下控制進(jìn)行,一般以細(xì)胞核染色清楚(晰)而細(xì)胞質(zhì)基本無色為佳。如果過分延長分色時間將導(dǎo)致染色太淺,應(yīng)重新染色后再行分色。

③切片經(jīng)酒精脫水后,入二甲苯時可出現(xiàn)白色不透明狀態(tài),此為脫水不徹底,應(yīng)將切片退回?zé)o水酒精,更換酒精、二甲苯,以求徹底脫水與透明。

④在染色過程中不要讓切片干燥,以免切片收縮、變形,影響細(xì)胞形態(tài)。切片從二甲苯取出或進(jìn)入二甲苯前,切片周邊均應(yīng)擦干凈或吸干多余水分。

⑤最后封固時,要用中性樹脂,防止日后褪色,蓋片要選大于組織塊的面積,如漏出一部分不久將會褪色,所用樹脂濃度要適當(dāng),樹脂封固時不能有氣泡。


三、結(jié)果的判斷和異常分析


1、實驗結(jié)果

細(xì)胞核被蘇木精染成鮮明的藍(lán)色,軟骨基質(zhì)、鈣鹽顆粒呈深藍(lán)色,粘液呈灰藍(lán)色。細(xì)胞漿被伊紅染成深淺不同的粉紅色至桃紅色,胞漿內(nèi)嗜酸性顆粒呈反光強的鮮紅色。膠原纖維呈淡粉紅色,彈力纖維呈亮粉紅色,紅血球呈橘紅色,蛋白性液體呈粉紅色。

著色情況與組織或細(xì)胞的種類有關(guān),也隨其生活周期及病理變化而改變。例如,細(xì)胞在新生時期胞漿對伊紅著色較淡或輕度嗜堿,當(dāng)其衰老時或發(fā)生退行性變則呈現(xiàn)嗜伊紅濃染。膠原纖維在老化和出現(xiàn)透明變性時,伊紅著色由淺變深。

2、異常結(jié)果

①紅藍(lán)失調(diào):若整體偏藍(lán),可能由于蘇木素染色時間過長、分化不夠,或伊紅失效,伊紅染色時間太短,分化過度;若整體偏紅,可能由于蘇木素染色時間不夠,分化過度,脫蠟不充分,蘇木素染不上,伊紅染色時間過長,分化不夠??筛鶕?jù)具體原因調(diào)整各步驟時間及更換試劑。

②HE染色后出現(xiàn)的大白色斑塊或斑點:脫蠟不充分,可適當(dāng)增加脫蠟時間以及更換新鮮的二甲苯。

③細(xì)胞核染色過淺:蘇木素染色時間過短,或蘇木素失效,或分化時間太長??芍匦氯旧瑢⒔M織切片放入0.01%氫氧化鈉、0.5%氨水、飽和的碳酸氫鈉溶液、乙醇溶液,每個 3-5min,接著重新染色。可以適當(dāng)增強組織的嗜堿性以增強核染色,如Zenker液固定的切片可放入5%碳酸氫鈉溶液中3h,自來水沖洗5-10min染色,或Bouin液固定的切片可放入 5%碳酸氫鈉溶液中1h,自來水沖洗10min染色。

④細(xì)胞核染色過深,胞漿著藍(lán)色:蘇木素染色時間過長,或切片太厚,或分化時間太短。這種情況首先鏡下看看切片厚度(最佳厚度 1~2 層細(xì)胞核),要么重新染色,要么重新制片。

⑤細(xì)胞核呈棕紅色改變:蘇木素染液失效;或蘇木素染色后反藍(lán)不足。應(yīng)該立即更換蘇木素染色液,或在流動自來水(pH7.5-7.8),或在稀釋的氨水溶液,或在0.2%碳酸氫鈉中適當(dāng)浸泡,這些步驟均可一定程度地加強蘇木素染色后的反藍(lán)效果。

⑥伊紅染色較淡:伊紅的pH發(fā)生了改變(pH可能已大于5),或反藍(lán)液體未漂洗干凈,殘留后影響胞漿嗜酸性染色,或者切片太薄并且在隨后的脫水步驟停留過久。應(yīng)檢查伊紅染色液pH,可使用乙酸調(diào)至4.6-5.0。根據(jù)具體原因,調(diào)整實驗步驟。


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